viernes, 27 de noviembre de 2020

Resultados de la investigación de Advanced Neural Biosciences, Inc.

 


(Tenga en cuenta que algunos lectores pueden considerar que el siguiente documento es de naturaleza muy "técnica" y que puede ser necesario leer algunos antecedentes y buscar algunos términos científicos y / o técnicos para ayudar al lector a comprender plenamente la investigación de ANB trabajo).

 

Investigación en criopreservación humana en biociencias neuronales avanzadas 
Por Aschwin de Wolf y Chana Phaedra 
Introducción 
En 2008 obtuvimos una modesta financiación para establecer un laboratorio destinado a investigar la criónica. Nuestra
El primer desafío fue establecer un programa de investigación que (a) se distinguiera de otros 
laboratorios de investigación dedicados a la investigación en criobiología, y (b) sería factible en términos de 
recursos financieros y tiempo. Inmediatamente reconocimos que nuestra mayor contribución sería
investigar protocolos criónicos en condiciones realistas. En este artículo presentamos al lector
a algunos de nuestros descubrimientos más importantes y sólidos. 
Hasta que la criónica esté disponible como un procedimiento médico electivo, todos los pacientes con criónica 
experimentar diversos grados de isquemia cerebral. Incluso en casos "buenos" donde la estabilización
Los procedimientos se inician inmediatamente después del pronunciamiento de la muerte legal, el período agónico anterior a 
La parada cardiopulmonar puede dar lugar a una alteración de la perfusión cerebral. En el caso de la criónica
organizaciones que no ofrecen servicios de reserva y estabilización, deberíamos esperar al menos 24 
horas de isquemia fría para un paciente típico (remoto), a menudo precedida por períodos significativos de 
isquemia cálida debida a un enfriamiento lento o nulo. 
El hecho de que ningún paciente criónico puede escapar completamente de algún grado de fuerzas de isquemia cerebral 
organizaciones criónicas para tratar una cuestión fundamental: ¿cómo funcionan nuestros protocolos y 
las soluciones de vitrificación funcionan en tales condiciones? En particular, en nuestro laboratorio hemos estado
interesado en el comportamiento de las soluciones de vitrificación en cerebros isquémicos. No debe ser a priori
asumió que las soluciones de vitrificación preferidas para tejidos no isquémicos se prefieren para isquemia 
tejidos también. Una línea de investigación relacionada es si la composición de las soluciones portadoras puede ser
alterado para mejorar la perfusión crioprotectora en el cerebro isquémico. 
La investigación de los procedimientos criónicos en condiciones realistas no se agota en modo alguno por 
la realización de experimentos en condiciones isquémicas. Otra gran diferencia entre
experimentos de criobiología realizados en el laboratorio y la práctica de la criónica es que el 
el control de las temperaturas de perfusión es limitado en los casos de criónica. Incluso los más sofisticados
Los protocolos criónicos exponen el cerebro a concentraciones tóxicas del agente de vitrificación a altas concentraciones
temperaturas cero. Por lo tanto, nuestras primeras investigaciones en 2009 se centraron en los efectos de
exponer los glóbulos rojos a altas concentraciones de VM-1 (el agente de vitrificación de Cryonics 
Instituto) con el fin de abordar la posibilidad de que exponer a un paciente a altas concentraciones de este 
agente en ausencia de un control riguroso de la temperatura podría producir glóbulos rojos instantáneos 
lisis (es decir, hemólisis). 
 
El glóbulo rojo como modelo de toxicidad por crioprotectores 
Hay varios enfoques disponibles para investigar la toxicidad de los crioprotectores, que van desde 
trabajar en química orgánica para la criopreservación de organismos mamíferos completos. Uno simple
modelo que permite investigaciones de "alto rendimiento" de la toxicidad de los crioprotectores utiliza sangre roja 
células (eritrocitos). Aunque los efectos tóxicos de varios agentes crioprotectores pueden diferir
entre los glóbulos rojos, otras células y tejidos organizados, resultados positivos en un glóbulo rojo 
El modelo puede considerarse el primer obstáculo experimental que debe superarse antes de que el agente sea 
considerado para pruebas en modelos más avanzados. Porque los glóbulos rojos están ampliamente disponibles
para la investigación, este modelo elimina la necesidad de experimentos con animales para los estudios de detección iniciales. 
También permite a los investigadores investigar los glóbulos rojos humanos. Otras ventajas incluyen el
complejidad reducida del modelo (los glóbulos rojos empaquetados se pueden obtener como un 
producto) y menores costos. 
Los glóbulos rojos pueden someterse a una serie de pruebas diferentes después de exponerlos a una 
agente crioprotector. La prueba más básica es la observación general de los glóbulos rojos en un
solución crioprotectora. Cuando se introducen altas concentraciones de un crioprotector (como en
vitrificación), es necesario un enfoque gradual para evitar el daño osmótico. Si un crioprotector
La solución es extremadamente tóxica, se producirá una rápida hemólisis, que se puede observar como una 
cambio de color de la solución, restos de células hemolizadas que se hunden hasta el fondo del tubo de ensayo, 
o diferencia insignificante entre el sedimento (si hay alguno) y el sobrenadante después 
centrifugación. Es importante tener en cuenta que estos efectos solo indican una membrana gruesa
daño y que la ausencia de hemólisis no es equivalente a la ausencia de toxicidad por crioprotectores. 
En nuestras investigaciones no observamos hemólisis instantánea de glóbulos rojos de oveja cuando 
El 70% de VM-1 (en solución portadora) se introdujo de forma escalonada en la habitación 
temperatura o cerca del punto de congelación del agua. Estudios morfológicos con microscopía óptica
mostró ligeras alteraciones para VM-1 (deshidratación, disminución de uniformidad) pero no hemos visto la 
alteraciones extremas y destrucción que se han observado en soluciones que fueron formuladas para 
producir hemólisis. Eliminando el enfoque paso a paso y exponiendo los glóbulos rojos al 70%
de VM-1 a la vez, sin embargo, produjo hemólisis. Este efecto fue más pronunciado a menor
temperaturas, presumiblemente porque a bajas temperaturas la velocidad de difusión de los crioprotectores es 
más deprimido que la velocidad de difusión del agua, provocando un daño osmótico más pronunciado. 
VM-1 consta de 35% de dimetilsulfóxido (DMSO) y 35% de etilenglicol (EG). 
El criobiólogo Yuri Pichugin identificó este crioprotector binario como uno de los menos tóxicos (no
patentado) soluciones de vitrificación binaria para la vitrificación de cortes de cerebro de hipocampo de rata. 
DMSO es un formador de vidrio más fuerte que EG, pero en el caso de DMSO como mono-agente, paso a paso 
la exposición de los glóbulos rojos a una solución al 70% produjo una hemólisis instantánea completa. Esta
La observación corrobora la contribución de la toxicidad específica a la hemólisis de los glóbulos rojos y 
la necesidad de neutralización de la toxicidad en soluciones de vitrificación. 
Dado que los ensayos de hemólisis de glóbulos rojos no son óptimos para cuantificar diferencias menores en 
toxicidad por crioprotectores, o para investigar los efectos de los crioprotectores en el sistema nervioso organizado. 
tejido, limitamos nuestro uso de este método a las investigaciones preliminares de nuevas variantes de VM-1 
y / o composición de solución de vehículo alternativa. 
Perfusión del cerebro isquémico 
El cerebro se distingue de la mayoría de los demás órganos por su alta utilización de energía. Cuando el
el cerebro se ve privado de oxígeno y otros sustratos energéticos, se produce una cascada bioquímica compleja 
que en última instancia da como resultado la descomposición. Dado que no conocemos el grado de degradación que
todavía permite la reconstrucción significativa del estado original del cerebro, el más conservador 
El enfoque consiste en limitar la isquemia tanto como sea posible en la práctica. 
El cerebro humano es demasiado grande para usar la inmersión como método para reemplazar el agua con un 
crioprotector. Este hecho requiere el uso de perfusión vascular para preparar el cerebro para
exposición a temperaturas criogénicas. Como consecuencia, la capacidad de proteger el cerebro contra el hielo
La formación no es un desafío independiente, sino que depende del estado del cerebro en el momento de 
perfusión crioprotectora. Es en esta coyuntura de isquemia y perfusión crioprotectora donde
han realizado la mayoría de nuestros experimentos. 
En un cerebro no isquémico, el equilibrio subóptimo de la solución de vitrificación puede ser 
compensado por la deshidratación. Este fenómeno tiene una relevancia limitada para los pacientes con
isquemia cerebral porque, a medida que avanza la isquemia, la barrera hematoencefálica a través de la cual se 
la deshidratación mediada se irá interrumpiendo progresivamente. Por ejemplo, crioprotector
la perfusión de la rata no isquémica produce una deshidratación grave del cerebro. Después de 24 horas de
isquemia fría, esta deshidratación se reduce drásticamente y después de 48 horas no hay evidencia de 
deshidratación cerebral después de la perfusión de crioprotectores. Este fenómeno nos permitió investigar
Perfusión crioprotectora en condiciones isquémicas sin modificaciones de la solución portadora. 
para limitar el encogimiento del cerebro inducido por crioprotectores. 
Nuestro primer enfoque para estudiar el efecto de la isquemia sobre el deterioro de la perfusión en el cerebro fue 
agregue tinta china al perfundido. Las áreas sin perfusión o con mala perfusión se distinguen por residuos
sangre y ausencia de tinta. En esos estudios nos limitamos a investigar la perfusabilidad
del cerebro sin congelación posterior para obtener una comprensión básica de este fenómeno 
sin variables adicionales. 
La inspección del cerebro después de la perfusión de tinta mostró que 60 minutos de isquemia en la habitación 
la temperatura es suficiente para producir un deterioro notable de la perfusión con el grado y 
Distribución del deterioro que empeora progresivamente a medida que dura la isquemia cálida. 
aumenta. 
Dos intervenciones que se presume mitigan el deterioro de la perfusión son la terapia antitrombótica 
e inducción de hipotermia. Administración de heparina anticoagulante antes de la isquemia y
la estreptoquinasa trombolítica después de la isquemia no logró mejorar la perfusión. Este resultado
corrobora que el "no reflujo" inducido por isquemia no se limita a la coagulación de la sangre y sugiere una 
papel de la participación de la sangre de una manera no coagulante. Revisiones científicas y clínicas de
el fenómeno de no reflujo ha identificado varios otros factores que contribuyen a la perfusión 
deterioro que incluye agregación de glóbulos rojos, edema vasogénico y celular, daño por radicales libres, 
y mediadores inflamatorios. Algunos estudios, incluidos los estudios de reanimación cerebral de Peter
Safar y sus colegas, han encontrado beneficios de una combinación de altas presiones de perfusión y 
hemodilución. Nuestros estudios sobre tales protocolos para períodos cortos de isquemia no son concluyentes y
durante períodos más largos (> 24 horas) de isquemia fría, hemos encontrado que las presiones de perfusión más altas 
durante la perfusión crioprotectora aumentan la formación de hielo después del enfriamiento a temperaturas criogénicas. 
Uno de nuestros hallazgos más sólidos es que la rápida inducción de hipotermia después de un paro circulatorio 
mitiga el fenómeno de no reflujo. El deterioro de la perfusión se redujo en gran medida cuando el cerebro
se enfrió in situ utilizando un baño de hielo portátil en miniatura. La tasa de enfriamiento de todo el cuerpo en estos
los experimentos excedieron 1 ° C por minuto. Dado que tales velocidades de enfriamiento no son prácticamente factibles
durante el enfriamiento externo en la estabilización de la criopreservación humana sin un agresivo 
combinación de diferentes modalidades de enfriamiento, incluido el lavado cíclico de pulmón, repetimos estos 
experimentos a una velocidad de enfriamiento (~ 0,18 ° C por minuto) que es práctica para la criopreservación humana 
y observó los mismos beneficios. Estos hallazgos corroboran fuertemente la práctica actual de
inducción de hipotermia en criónica y sugieren que incluso disminuciones modestas del cerebro 
La temperatura puede mitigar significativamente la alteración de la perfusión, incluso si la reducción del metabolismo 
la demanda no puede evitar el agotamiento de la energía en el cerebro. 
Otro hallazgo constante en nuestra investigación es que la sustitución de sangre antes del paro circulatorio 
reduce fuertemente el deterioro de la perfusión. En el modelo de tinta china no observamos evidencia de
alteración de la perfusión después de hasta 72 horas de isquemia fría tras la sustitución de sangre con m-
RPS-2 (la solución portadora de VM-1). Una limitación de este modelo es que el lavado completo de
la sangre antes de la isquemia excluye la observación de sangre residual después de la perfusión como indicador 
de alteración de la perfusión. El llenado de recipientes con tinta china se correlaciona fuertemente con el grado de
alteración de la perfusión, pero no descarta la presencia de pequeñas bolsas de perfusión deficiente 
áreas en el cerebro. Debido a que la perfusión de tinta china puede no predecir completamente el grado de
equilibrio crioprotector que es posible después de la isquemia caliente y fría, refinamos aún más nuestra 
modelo e introdujo la observación del grado de formación de hielo después de la perfusión crioprotectora 
y enfriamiento como punto final. 
Perfusión crioprotectora del cerebro isquémico 
Como regla general, las intervenciones criónicas destinadas a prevenir y mitigar la lesión isquémica son 
no evaluado con perfusión crioprotectora y formación de hielo como criterio de valoración. Como consecuencia,
Existe una grave falta de conocimiento sobre la eficacia de los protocolos de estabilización criónica en 
reduciendo la formación de hielo. Uno de los modelos de investigación más valiosos de nuestro laboratorio ha sido realizar
perfusión crioprotectora en diversas condiciones de isquemia (fría). Las limitaciones de espacio nos impiden revelar todos nuestros hallazgos, pero nuestros descubrimientos más importantes se analizan a continuación. Más
de nuestras investigaciones sobre la criopreservación del cerebro isquémico se han realizado con VM-
1, la solución de vitrificación del Cryonics Institute. 
El hallazgo más fundamental y robusto de estos experimentos es que la duración de las temperaturas cálidas y 
La isquemia fría se asocia positivamente con el deterioro de la perfusión y la formación de hielo después del enfriamiento. 
a las temperaturas del nitrógeno líquido. Nuestros estudios corroboran el trabajo felino pionero que la criónica
El investigador Michael Darwin hizo en esta área con micrografías electrónicas en la década de 1980. En la rata
cerebro hemos identificado una jerarquía consistente de vulnerabilidad a la isquemia fría inducida 
deterioro de la perfusión según lo revelado por la inspección del cerebro perfundido y signos de formación de hielo 
después del enfriamiento criogénico. Las siguientes cuatro áreas principales están clasificadas por vulnerabilidad creciente:
Corteza cerebral; subcorteza cerebral; corteza cerebelosa; subcorteza cerebelosa.
No tenemos una comprensión completa de la razón detrás de esta clasificación, pero estos hallazgos pueden ser 
algo reconfortante a la luz de nuestro entendimiento actual de que la identidad más crítica 
la información se almacena en la corteza del cerebro y que el cerebelo puede ser el menos importante 
área en este sentido. No obstante esto, nuestra investigación ha tenido como objetivo superar la perfusión
deterioro y formación de hielo en pacientes con exposición isquémica extensa. 
Hemos estudiado varias intervenciones diferentes para mejorar los resultados en cerebros isquémicos fríos. 
y la mayoría de nuestros experimentos involucraron la alteración de la solución portadora crioprotectora. 
Comenzamos agregando varias sales y azúcares no permeables y de alto peso molecular. 
polímeros a la solución portadora para mitigar el edema con la expectativa de que esto 
mejorar el resultado. Este enfoque no produjo el resultado deseado ni una reducción significativa
tampoco se observó de edema intersticial. 
Observamos un mejor resultado en términos de reducción de la alteración de la perfusión en presencia 
de concentraciones adecuadas de los polímeros de alto peso molecular PVP K360, dextrano 500 y 
sulfato de dextrano 500. Inicialmente atribuimos estos resultados alentadores a la capacidad de estos 
polímeros para "sellar" las membranas con fugas, aunque esta interpretación parecía estar en desacuerdo con la 
se observó falta de reducción del edema. 
Se produjo un gran avance cuando diseñamos una serie de soluciones que se hicieron 
equívoco con una solución portadora basada en dextrano sulfato 500 - nuestra portadora más exitosa 
solución hasta la fecha. Todas estas soluciones produjeron resultados comparables en términos de superación
deterioro de la perfusión, lo que indica que las propiedades ventajosas de estos 
Las soluciones de peso no eran específicas de su composición química, pero pueden estar mediadas por 
mayor viscosidad. Esta interpretación fue corroborada por nuestra observación de que podríamos
también producen un mejor resultado cuando realizamos perfusión crioprotectora a temperaturas bajo cero 
temperaturas, lo que también aumenta la viscosidad de las soluciones. Protocolos que disminuyeron gradualmente
viscosidad durante la perfusión crioprotectora con el objetivo de aprovechar la limpieza de vasos 
Las propiedades de las soluciones de mayor viscosidad al inicio de la perfusión y el equilibrio mejorado de la solución de vitrificación hacia el final de la perfusión no mejoraron los protocolos en los que el 
la viscosidad se mantuvo constante (para una presión dada) en todos los pasos. 
Al contrario de lo que cabría esperar de la vasta literatura sobre el fenómeno de no reflujo, 
realizar perfusión de crioprotectores a altas presiones (> 100 mmHg) en cerebros con 24 y 48 
horas de isquemia fría empeoraron el resultado. Especulamos que estas altas presiones "empujan"
más perfundido con propiedades de formación de vidrio bajas en el espacio intersticial, lo que limita la 
equilibrio de las concentraciones más altas de la solución de vitrificación durante las últimas etapas de 
perfusión. De hecho, muchos de nuestros mejores resultados se obtuvieron cuando bajamos el
presión de perfusión por debajo de nuestra presión arterial estándar de 100 mmHg. También observamos
perfusión mejorada y formación de hielo reducida cuando eliminamos uno o dos pasos en nuestros tres-
protocolo de perfusión escalonada. Este hallazgo puede ofrecer algunas pistas importantes sobre los mecanismos que
contribuir a una mejor perfusión de crioprotectores en el cerebro isquémico. Desde que comencé con tal
altas concentraciones iniciales del crioprotector al inicio de la perfusión crioprotectora claramente 
contradice la práctica básica de la criobiología para minimizar la lesión osmótica y la consiguiente ruptura celular, 
no hemos explorado este enfoque con mucho detalle. 
Hasta ahora, hemos empleado tres métodos de enfriamiento distintos. En nuestros primeros experimentos de enfriamiento,
utilizaron inmersión de nitrógeno líquido para enfriar muestras a temperaturas de nitrógeno líquido. Para evitar
fracturamiento, más tarde modificamos un pequeño laboratorio dewar para permitir un descenso más gradual de la 
temperatura a -130 ° C (ligeramente por debajo de la temperatura de transición vítrea de VM-1). Actualmente nosotros
Emplear un congelador eléctrico de temperatura ultrabaja que puede enfriar muestras a -130 grados Celsius, 
lo que también nos permite almacenar nuestras muestras durante períodos más prolongados de nuestro tiempo. Nuestros hallazgos sobre
La formación de hielo después de la perfusión crioprotectora del cerebro isquémico ha sido idéntica para todos 
tres métodos de enfriamiento. La distribución de la formación de hielo sigue generalmente las áreas de perfusión.
deterioro observado antes del enfriamiento, que validó las investigaciones que realizamos con 
Tinta china. No hemos encontrado ningún beneficio para la adición de agentes farmacológicos al
solución portadora. Nuestro mejor conocimiento sobre la perfusión crioprotectora inducida por isquemia fría
deterioro es que dos factores contribuyentes principales son la agregación de glóbulos rojos (es decir, hiperviscosidad) 
y edema. 
Soluciones de preservación de órganos 
La sustitución de sangre remota en criónica tiene varios argumentos importantes (teóricos) a favor 
de la práctica. Reemplazar la sangre con una solución de preservación de órganos extiende el período que
Los órganos se pueden recibir del almacenamiento estático en la conservación clínica de órganos. El procedimiento también
permite una velocidad de enfriamiento más rápida en el campo de lo que es posible con enfriamiento externo solo. los
perfundido a base de manitol MHP-2 que actualmente utiliza la Alcor Life Extension Foundation 
se ha desarrollado en una serie de experimentos en los que se recuperaron perros después de 5 horas de 
hipotermia ultraprofunda asanguínea. 

El investigador de criobiología Yuri Pichugin ha cuestionado el valor de la sustitución de sangre remota en 
criónica porque ninguna de las soluciones de preservación de órganos que probó (incluyendo MHP-2 y 
UW Solution) podría mantener la viabilidad de los cortes de cerebro del hipocampo durante períodos que son típicos de 
tiempos de transporte en la práctica criónica. Nuestra propia investigación, sin embargo, ha sido informada por
posibilidad de que la sustitución de sangre a distancia no sea suficiente en términos de preservación de la viabilidad, pero podría 
aún confieren beneficios en términos de mejora de la perfusión crioprotectora. 
Hemos comparado los controles (es decir, sin sustitución de sangre) con las siguientes soluciones de lavado: 
m-RPS-2, RPS-2 y MHP-2; y observó que la sustitución de sangre confiere importantes
beneficios en términos de mejorar la perfusión crioprotectora y reducir la formación de hielo. En particular,
MHP-2 superó a las otras soluciones y nos ha permitido realizar perfusión crioprotectora 
después de 48 horas de isquemia fría sin sangre sin formación de hielo en el cerebro después de enfriar por debajo 
la temperatura de transición vítrea. Incluso a las 72 horas, la formación de hielo es relativamente menor en comparación con
72 horas de isquemia fría en las que la sangre queda en el cerebro, lo que produce una perfusión severa 
deterioro y formación de hielo. Estos experimentos reivindican la práctica de la sangre a distancia
sustitución en criónica, pero también enfatizar que la composición de la preservación de órganos 
la solución importa mucho. 
Ninguna de las soluciones de conservación de órganos que hemos probado (incluidas las más avanzadas y recientes 
formulaciones de colegas) mitigar el severo edema vasogénico que se observa durante 
criopreservación después de períodos prolongados de isquemia fría. Hemos diseñado una serie de
experimentos para mejorar la formulación de MHP-2 pero ninguna de estas variantes ha sido 
exitoso hasta ahora en la disminución del edema y con frecuencia produjo peores resultados que MHP-2 en 
Reducir la formación de hielo después de una isquemia fría sin sangre. 
Criopreservación después de la fijación química 
La idea de arreglar químicamente el cerebro antes de la criopreservación sigue siendo un tema de interés. 
entre los defensores de la criónica. De hecho, este procedimiento se discutió en Eric Drexler's
tratamiento clásico de nanotecnología molecular, motores de creación. Un argumento que podría ser
ofrecido a favor de este procedimiento es que detiene el desarrollo de isquemia en pacientes con 
retrasos largamente esperados entre el pronunciamiento de la muerte legal y la criopreservación. Por un largo
vez esta idea ha sido recibida con escepticismo debido a observaciones experimentales (no publicadas) 
que tales protocolos corren el riesgo de producir congelación intracelular durante el enfriamiento. Porque la corriente
La generación de crioprotectores está diseñada para eliminar la formación de hielo por completo. 
tema y diseñó experimentos para estudiar los efectos de la criopreservación después de la fijación química. 
Cuando no hay retraso isquémico antes de la fijación química, la fijación química aún permite 
perfusión crioprotectora, y no se observó formación de hielo en el cerebro después de enfriar a líquido 
temperaturas del nitrógeno después de hasta dos semanas de almacenamiento hipotérmico del cerebro fijo in vivo. 
Estos experimentos han sido únicos en el sentido de que no se observó edema de todo el cuerpo durante 
perfusión crioprotectora. Sin embargo, observamos una deshidratación severa del cerebro después de la perfusión crioprotectora del cerebro fijo, un fenómeno que no pudimos eliminar cuando
agregamos un agente para abrir la barrera hematoencefálica a nuestra solución portadora. 
Una limitación práctica de la criopreservación después de la fijación es que los retrasos entre el pronunciamiento de 
La muerte legal y la fijación podrían comprometer la eficacia de este procedimiento y producir el tipo de 
daño por congelación que tradicionalmente se ha asociado con este procedimiento. Cuando nos retrasamos
La fijación química por una hora, el lavado de la sangre y la fijación fueron incompletas y extensas. 
la formación de hielo siguió a la perfusión crioprotectora. Este fenómeno puede superarse
alteración de la solución portadora fijadora y diferentes protocolos de perfusión, pero es dudoso que 
protocolos tan sofisticados se pueden realizar en la mayoría de los casos en los que la combinación de 
la fijación química y la crioprotección pueden resultar atractivas. 
Microscopía electrónica del cerebro isquémico 
En colaboración con el Dr. Michael Perry de Alcor Life Extension Foundation tenemos 
preparó muestras de tejido cerebral para microscopía electrónica para puntos de tiempo de hasta 81 horas de 
isquemia normotérmica. Dado que el cerebro de la rata se enfría a un ritmo mucho más rápido que el cerebro humano después
paro circulatorio, decidimos usar una incubadora para mantener el cerebro in vivo en el cuerpo 
la temperatura sería una aproximación mejor y más conservadora de lo que se esperaría 
que ocurra en el cerebro humano. Las micrografías electrónicas nos han dado una idea de la ultraestructura
propiedades del cerebro después de varios períodos de isquemia cálida. El Dr. Perry está usando estas imágenes para
desarrollar un algoritmo que modele el estado del tejido isquémico después de varios períodos de calor 
isquemia. 
El Dr. Perry también ha apoyado investigaciones para examinar el grado de fijación y a largo plazo 
efectos de la fijación retardada del cerebro. Los resultados preliminares de estos experimentos indican que
incluso breves retrasos entre el paro circulatorio y la fijación química del cerebro producen 
Fijación incompleta y riesgo de descomposición progresiva de áreas mal fijadas con el tiempo. 
Si tales hallazgos desacreditan la fijación química como una alternativa de bajo costo a la criónica no puede ser 
resuelto de manera concluyente por la investigación experimental debido a nuestra comprensión incompleta de la 
base neuroanatómica de la identidad y las capacidades de las futuras tecnologías de reparación celular. Uno
También podría argumentar que una congelación directa es preferible a la fijación química, pero que 
la fijación sigue siendo preferible a la descomposición completa. 
Implicaciones para los protocolos criónicos 
Hasta la fecha, nuestras investigaciones sobre la criopreservación del cerebro isquémico apoyan firmemente la 
práctica de standby y estabilización en criónica. En particular, inducción rápida de hipotermia
después del pronunciamiento de muerte y sustitución remota de sangre con una solución de conservación de órganos 
Puede limitar el grado de deterioro de la perfusión y la formación de hielo después de la perfusión crioprotectora. 
y enfriamiento. Hemos identificado algunos principios emergentes para la alteración de las soluciones de portadores y
protocolos de perfusión crioprotectora que pueden superar el no reflujo en el cerebro después de la isquemia fría 
y reducir la formación de hielo. En pacientes con diferentes niveles de isquemia, dichos protocolos aún se limitan a la etapa experimental hasta que los ensayos ultraestructurales y de viabilidad hayan validado el uso.
de estas soluciones y protocolos. 
Nuestra investigación sugiere que la fijación química del cerebro antes de la perfusión crioprotectora podría 
ser beneficioso en caso de retrasos prolongados (transporte), pero los efectos adversos de la isquemia limitan el uso 
de tales protocolos a un conjunto muy limitado de circunstancias en las que hay un retraso insignificante 
entre paro circulatorio y fijación química. 
Futuros desarrollos 
Los desarrollos futuros en nuestro laboratorio se refieren a mejoras adicionales de los protocolos de perfusión y enfriamiento. 
En nuestros experimentos más recientes, hemos estado realizando perfusión crioprotectora utilizando un 
sistema de rampa que introduce gradualmente el agente de vitrificación en el cerebro (a diferencia de distintos 
pasos de concentración creciente) combinado con enfriamiento hasta justo debajo de la transición vítrea 
temperatura de la solución de vitrificación. Seguiremos actualizando nuestra configuración crioprotectora a
hacer que se adapte al equipo de perfusión convencional; en última instancia, esperamos presentar
Funciones controladas por computadora. También pretendemos alterar nuestro circuito para realizar perfusión crioprotectora.
a altas temperaturas bajo cero controladas. 
Una gran parte de nuestro tiempo y recursos en los próximos años se dedicará a desarrollar un 
conjunto de ensayos de viabilidad que se pueden utilizar para detectar la toxicidad de soluciones de vitrificación mejoradas. 
Dichos ensayos no se limitarán al trabajo de cortes de cerebro in vitro, sino que incluirán todo el cerebro in situ. 
electrofisiología también. 
También hemos recibido apoyo financiero para desarrollar un modelo de reanimación de cuerpo entero, que 
nos permiten validar soluciones de conservación de órganos y soluciones de vitrificación en condiciones hipotérmicas y 
altas temperaturas bajo cero. 
Nuestro esfuerzo por simular condiciones criónicas realistas en nuestro laboratorio sigue siendo un trabajo en progreso. Hasta aquí
nos hemos limitado principalmente a la perfusión crioprotectora después de una isquemia fría o caliente, 
con un fuerte énfasis en la isquemia fría. Observaciones recientes en nuestro laboratorio indican que existe una
fisiopatología distinta asociada con isquemia caliente (e hipertermia) que limita simplista 
extrapolaciones entre isquemia fría y cálida mediante la ecuación de Arrhenius. 
En un modelo criónico más realista, los períodos variables de isquemia caliente preceden a la isquemia fría. En
En particular, nuestro objetivo es investigar la eficacia de la sustitución de sangre cuando la sustitución de sangre es 
retrasado; un escenario que es común en la práctica criónica y que básicamente constituye la regla para
organizaciones que no ofrecen servicios de reserva y estabilización. 
Advanced Neural Biosciences, Inc., se incorporó en 2008 y realiza criobiología neural 
investigación. Hemos recibido financiación y equipamiento de la Sociedad Inmortalista, Life
Extension Foundation, Cryonics Institute y Alcor Life Extension Foundation. Estamos
extremadamente agradecido con Alan Mole, Mark Plus, York Porter, Ben Best, Jordan Sparks, Luke 
Parrish, James Clement y el Dr. Peter Gouras para obtener información adicional financiera, logística y general. 
apoyo. 

jueves, 26 de noviembre de 2020

Desarrollo aperture barrera hematoencefálica para maximizar la supervivencia cerebral en criónica:

 

1
PPA: método de criopreservación de cerebros completos
Información de propiedad: propiedad del Cryonics Institute
Solicitud de patente provisional
Título:
Método de criopreservación de cerebros completos
Inventor:
Yuriy Pichugin
24355 Sorrentino Ct.
Municipio de Clinton
MI, 48035
Referencia cruzada a aplicaciones relacionadas: ninguna
Investigación patrocinada por el gobierno federal: Ninguna
Listado de secuencias: Ninguno
Documentos de referencia:
DOCUMENTOS DE PATENTE DE EE. UU.
5.592.168 Septiembre de 1999 Wowk, et al
6.395.467 Mayo de 2002 Fahy, et al.
CAMPO DE LA INVENCIÓN
El campo de la invención es la criobiología y la criónica.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
La criobiología comenzó a desarrollarse en 1949 cuando los agentes crioprotectores (CPA)
descubierto para la criopreservación de suspensiones celulares. Aproximadamente 200 compuestos han sido
probado como CPA. Sin embargo, el número de crioprotectores efectivos está limitado por veinte
derivados de las tres clases químicas, a saber, polioles (dioles, glicerol), amidas y
sulfóxidos (YI Pichugin, Problems of Cryobiology 2: 3-9, 1993). Los mejores CPA son

2
glicerol, dimetilsulfóxido, etilenglicol, 1,2-propanodiol, dimetilformamida, 2,3-
butanodiol, dimetilacetamida, 2-metoxietanol.
La cristalización intracelular del agua es un factor muy dañino para los sistemas biológicos durante
su criopreservación. Los CPA se utilizan para prevenir esta cristalización intracelular. Hay un
gran diferencia entre las suspensiones de células criopreservantes en comparación con
criopreservar tejidos y, especialmente, criopreservar órganos completos. Las suspensiones celulares pueden
ser criopreservados por congelación. Los tejidos no se pueden criopreservar con éxito mediante congelación.
La congelación es un proceso de formación de cristales de hielo que puede dañar las células. La vitrificación es un
proceso de enfriamiento de materiales biológicos con crioprotectores a -130ºC o menos sin hielo
formación.
El método de vitrificación fue descubierto principalmente por GM Fahy en 1981-1984. Desde eso
tiempo que muchos investigadores han intentado utilizar la vitrificación para la criopreservación de varios tejidos
y órganos. Los investigadores han logrado vitrificar pequeños tamaños de tejidos, pero han
no ha tenido éxito en criopreservar órganos enteros como riñones, hígados y corazones para
trasplante. El principal problema al intentar vitrificar órganos es el requisito de utilizar
altas concentraciones (60-65%) de CPA para vitrificarlos a velocidades de enfriamiento relativamente lentas y
para evitar la desvitrificación a ritmos lentos de calentamiento. Hasta hace poco, los investigadores no podían
superar por completo la toxicidad de estas altas concentraciones para los órganos (GM Fahy
3
et al., Cryobiology 48: 22-35, 2004). La toxicidad de los crioprotectores en los métodos de vitrificación ha
ha sido el factor limitante para la recuperación de sistemas biológicos.
La criónica utiliza los logros de la criobiología para criopreservar cuerpos humanos enteros o
cabezas después del pronunciamiento legal de la muerte. Criopreservación de todo el cerebro humano mediante
la vitrificación es un objetivo principal de la criónica. Anteriormente algunas mezclas de vitrificación (VM)
se encontraron para la conservación de tejidos renales y vasos sanguíneos. GM Fahy y col.
desarrolló mezclas de vitrificación con baja toxicidad, como VM-3 y M22 para
criopreservación de riñones de conejo (GM Fahy et al., Cryobiology 48: 157-178, 2004). En
2006, artículo dedicado al estudio de algunas VM (Vegs y VM-3) para la vitrificación de
Se publicaron cortes finos de hipocampo de rata (YI Pichugin et al., Cryobiology 52: 228-240,
2006). Sin embargo, las rápidas tasas de enfriamiento y calentamiento que se emplearon para obtener
La supervivencia muy alta de pequeñas partes del tejido cerebral no se puede utilizar para criónica.
tecnología.
Uno de los principales problemas de la criopreservación de cerebros completos es su grave deshidratación.
durante la perfusión de VM. Todos los CPA tienen tasas de penetración mucho más lentas a través de los
barrera hematoencefálica que el agua. El agua sale del cerebro mucho más rápido que los CPA
entrar en el cerebro durante la perfusión de CPA. Como resultado, la deshidratación severa del cerebro.
ocurre durante la perfusión. La deshidratación severa es un factor muy dañino porque
aumenta drásticamente la toxicidad del CPA. Los CPA penetran en cortes cerebrales delgados por simple
difusión y así las rodajas no experimentan una deshidratación severa.
4
BREVE RESUMEN DE LA INVENCIÓN
La invención proporciona un método que fue especialmente diseñado para vitrificar cerebros completos.
Todos los métodos de congelación o vitrificación conocidos dan como resultado una supervivencia muy pobre de las células cerebrales.
de cerebros enteros después de su criopreservación. Este nuevo método puede aumentar significativamente
supervivencia de las células cerebrales. Este método se denominará CI (Cryonics Institute)
método de criopreservación.
DESCRIPCIÓN DETALLADA DE EL INVENTO
La vitrificación produce resultados mucho mejores (recuperación promedio del 80%) que la congelación (alrededor del 20%
recuperación) para la criopreservación de tejidos biológicos (tejidos contráctiles, cartílago y sangre
buques (MJ Taylor et al, en: Life in the Frozen State, BJ Fuller et al, eds., CRC Press,
2004, págs. 603–641). Los métodos de congelación no han sido eficaces para criopreservar
tejidos. Varios CPA en diversas concentraciones (15% a 60%), modos de exposición a CPA,
Se probaron las velocidades de enfriamiento y calentamiento y las temperaturas finales de congelación. Sin embargo, congelando
los métodos no dieron buenos resultados. La supervivencia máxima de los tejidos cerebrales después
la congelación fue solo alrededor del 20% del control.
TOXICIDAD CRIOPROTECTANTE
El estudio del método de vitrificación se inició probando la toxicidad del mejor individuo
CPA en cortes de hipocampo de rata. En el estudio se utilizaron cortes de hipocampo de rata adulta como
5
modelo muy utilizado del tejido cerebral en neurociencia. El ensayo de la relación K + / Na + fue
seleccionado para estudio porque es una prueba funcional sensible para evaluar la viabilidad de
tejidos biológicos.
En primer lugar, los mejores CPA no deben tener ningún efecto tóxico o al menos una toxicidad muy baja en
concentraciones (50% a 70%). Sin embargo, la práctica criobiológica ha demostrado que no existen
compuestos completamente no tóxicos en concentraciones superiores al 50-55% para biológicos
tejidos. Incluso compuestos neutros como etilenglicol y glicerol en una concentración del 60%
tienen un cierto efecto tóxico moderado sobre los tejidos cerebrales según el ensayo de relación K + / Na + .
Ninguno de los CPA individuales es bueno para el método de vitrificación. Para disminuir la toxicidad de CPA
y para aumentar la eficacia de la vitrificación de CPA, se debe utilizar una mezcla de CPA.
Los métodos de vitrificación emplean una mezcla de CPA, pero no de CPA individuales. Específico,
La toxicidad bioquímica de las mezclas de CPA puede ser bastante menos tóxica que la toxicidad del individuo.
CPA que tienen las mismas concentraciones que las mezclas de CPA porque la concentración efectiva
de cada CPA individual es menor en las mezclas.
Se eligieron cinco CPA como los mejores CPA potenciales para mezclas de vitrificación. Éstas eran
etilenglicol (EG), glicerol (GL), 1,2-propanodiol (PG), dimetilformamida (DMF),
y dimetilsulfóxido (DMSO). El número de CPA tóxicos relativamente bajos se limita a
estos compuestos. Era racional usar el CPA menos tóxico en una concentración más alta que
los otros CPA más tóxicos para una mezcla de vitrificación. Este CPA fue nombrado el principal
CPA o el componente básico de la mezcla de vitrificación. EG fue seleccionado como el principal
CPA porque es el menos tóxico para los tejidos cerebrales. 1,2-propanodiol, dimetilformamida,
6
y el dimetilsulfóxido no debería ser el componente básico de las VM porque son demasiado
tóxico para este papel.
El glicerol tiene casi el mismo efecto tóxico sobre los tejidos cerebrales que el EG. Podría ser considerado
para su uso como CPA principal por este motivo. Sin embargo, el glicerol tiene una viscosidad muy alta y
muy baja eficiencia de vitrificación, por lo que no se puede utilizar como CPA primario en
mezclas de vitrificación. Además, el glicerol penetra muy lentamente a través del cerebro sanguíneo.
barrera y demasiado lentamente en los tejidos y células cerebrales. Como resultado, el glicerol causa un exceso
deshidratación del cerebro, tejidos y células. El uso de glicerol como componente básico en
Los VM aumentan su viscosidad varias veces. Estas propiedades negativas del glicerol hacen
la perfusión de cerebros y cuerpos enteros es ineficaz. 1,4 y 2,3-butanodioles son muy similares
al glicerol en este sentido.
Los CPA secundarios en VM pueden ser glicerol, 1,2-propanodiol, dimetilformamida y
dimetilsulfóxido. Se encontró que el mejor CPA secundario para VM es DMSO.
El efecto tóxico de las mezclas de CPA dependió significativamente de la temperatura de exposición. Uno
Una de las leyes más importantes de la criobiología es que la toxicidad del CPA puede disminuir a menores
temperaturas. Por tanto, los tejidos cerebrales deberían estar saturados de VM a bajas temperaturas. los
La temperatura más alta para el inicio de la exposición al CPA es 0ºC. El menos tóxico
Los crioprotectores se utilizan al comienzo de la saturación de cortes cerebrales con VM.
Los experimentos con cortes de hipocampo de rata demostraron que las soluciones de EG al 30-35% no son
tóxico a 0ºC. Los puntos de fusión de las soluciones EG preparadas en la solución de vehículo CI-VM fueron:
7
4,3ºC para 10%, -9,5ºC para 20%, -14ºC para 30% y -23,5ºC para 40%. Para disminuir la toxicidad
de CPA secundarios más tóxicos, los cortes cerebrales deben exponerse con ellos en
temperaturas inferiores a 0ºC. Saturación de las rodajas con 30% EG o 40% EG permitido
combinándose con CPA secundarios a -14ºC o -23ºC, respectivamente, disminuyendo el CPA tóxico
efectos. Este procedimiento de saturación fue nuevo en comparación con los procedimientos anteriores.
de otros investigadores, por ejemplo el Dr. Fahy et al. Los mejores métodos de vitrificación han sido
descrito por el Dr. Fahy et al (patente de EE.UU. 6.395.467). Los términos criobiológicos estaban bien definidos
en esa patente, que fue elegida como prototipo para la mejora de la vitrificación
procedimientos.
Se estudiaron las toxicidades de numerosas mezclas de los mejores CPA. La mezcla de EG y
DMSO produjo los mejores resultados en la criopreservación de tejido cerebral. Esta solución fue
denominada CI-VM-1 (la mezcla de vitrificación del Cryonics Institute). CI-VM-1 puede
criopreservar cortes cerebrales con una supervivencia de hasta el 100% utilizando CI-VM-1 al 48-50% para
tasas de enfriamiento y calentamiento y con hasta un 85% de supervivencia utilizando 65% CI-VM-1 para el
tasas más lentas. La composición de EG y DMSO en la mezcla de vitrificación debe ser
variaba dependiendo de las tasas de enfriamiento y calentamiento.
La toxicidad de los crioprotectores en los métodos de vitrificación será el factor limitante para la supervivencia de
tejidos cerebrales si otros parámetros de los procedimientos de vitrificación están perfectamente optimizados. UNA
El indicador final de un procedimiento de vitrificación perfecto es que la viabilidad del tejido antes del enfriamiento.
(un indicador de toxicidad de CPA) se retiene sin cambios (dentro del error experimental) después de
enfriamiento y calentamiento.
8
Es muy importante para la perfusión de cerebros humanos completos tener en cuenta la viscosidad de
VM y permeación de CPA a través de la barrera hematoencefálica, así como en el cerebro
tejidos y células. CI-VM-1 que contiene solo EG y DMSO tiene baja viscosidad y relativamente
buena permeabilidad a bajas temperaturas. Sin embargo, las soluciones portadoras conocidas aumentan la
viscosidad de las máquinas virtuales y puede hacerlas inestables para el almacenamiento a baja temperatura. Un nuevo tipo
de solución portadora fue diseñada para CI-VM-1. Esta solución se denomina portadora CI-VM
solución. La solución portadora CI-VM tiene una composición muy simple, a saber, 28 mM / L
cloruro de potasio, glucosa 230 mM / L y el tampón orgánico TRIS-HCl 10 mM / L.
Un problema más importante de la criopreservación de cerebros completos es su grave
deshidratación durante la perfusión VM. Todos los CPA tienen tasas de penetración mucho más lentas a través de
la barrera hematoencefálica intacta (BBB) ​​que el agua. El agua sale mucho más del cerebro
rápidamente de lo que los CPA ingresan al cerebro durante la perfusión de CPA. Como resultado, severo
la deshidratación del cerebro ocurrió durante la perfusión. La deshidratación severa es muy dañina.
factor porque aumenta drásticamente la toxicidad del CPA. Los CPA penetran en el cerebro delgado
rodajas por difusión simple y así las rodajas no tienen deshidratación severa.
EL ESTUDIO DE LOS DETERGENTES COMO MODIFICADORES DEL CEREBRO SANGUÍNEO
BARRERA
Se puede obtener un gran beneficio mediante el uso de modificadores BBB. Por ejemplo, 30%
El etilenglicol (EG) no es tóxico para los tejidos cerebrales en determinadas condiciones. Rata
9
las rodajas de hipocampo expuestas a 30% de EG a 0ºC tuvieron una supervivencia del 100% según el K / Na
ensayo de relación. Cerebros de rata perfundidos con 30% de EG a 0ºC sin modificadores de BBB
tenía sólo alrededor del 40% de supervivencia. Los cerebros tenían aproximadamente un 35% de deshidratación. Cuando los modificadores
de las BBB de rata, los cerebros retuvieron sus volúmenes normales durante la perfusión. Como
como resultado, los cerebros de rata que fueron perfundidos con 30% de EG a 0ºC con la concentración adecuada
de los modificadores BBB tuvieron una supervivencia del 100%.
La tarea principal fue modificar la BBB para que el cerebro retenga su volumen normal durante
Perfusión VM. Estudiamos doce compuestos de la clase química detergente. Cuatro de
doce compuestos mostraron una actividad deseable. Los describimos como modificadores de la sangre.
barrera cerebral o modificadores BBB.
No existe una buena teoría del efecto de los detergentes en las membranas biológicas,
células o la BBB. Los investigadores utilizan métodos empíricos para la selección de los mejores
detergentes para sus fines.
Se utilizaron ratas para probar todos los detergentes. Sin embargo, los mejores modificadores de BBB también fueron
probado en cerebros de ovejas. Los cerebros de las ovejas retuvieron el volumen durante la perfusión VM, así como
los cerebros de rata lo hicieron. El mejor de los cuatro buenos modificadores fue seleccionado para este nuevo IC
método de criopreservación.
Todos los métodos de criopreservación conocidos dan como resultado una supervivencia muy pobre de las células cerebrales de
cerebros enteros después de su criopreservación. Este nuevo método de CI aumenta significativamente
10
supervivencia de las células cerebrales. El uso adecuado del método puede preservar alrededor del 80% de las células.
después de la criopreservación de cerebros completos.
EJEMPLO 1
Se estudió la toxicidad de los agentes crioprotectores individuales para el tejido cerebral de ratas.
TABLA 1.
-------------------------------------------------- --------------------------------
Toxicidad de los CPA más conocidos y utilizables para el tejido cerebral de ratas.
CPA
% de supervivencia
-------------------------------------------------- --------------------------------
etilenglicol
66,3 ± 10,4
glicerol
60,0 ± 4,8
1,2 propanodiol
31,5 ± 14,8
dimetilformamida
25,9 ± 4,0
dimetilsulfóxido
17,9 ± 2,6
dimetilacetamida
8,2 ± 1,6
2-metoxietanol
6,3 ± 1,8
metilformamida
5,1 ± 2,9
formamida
2,1 ± 0,5
-------------------------------------------------- ---------------------------------
11
Los experimentos se realizaron utilizando las mismas condiciones experimentales (exposición de 15 minutos
de los cortes de hipocampo de rata con 60% de VM a -10˚C). No hubo ningún intento de encontrar
condiciones de experimento óptimas para cada CPA.
También se probó metilacetamida, pero sus soluciones acuosas en comparación con
la dimetilacetamida no fue estable y formó precipitados durante el almacenamiento durante la noche a 0ºC.
El procedimiento de los experimentos con cortes de hipocampo de rata ha sido previamente
descrito en detalle previamente (YI Pichugin et al., Cryobiology 52: 228-240, 2006).
La supervivencia de los cortes de hipocampo después del tratamiento se expresó como un porcentaje de la
supervivencia de los controles no tratados. Este estándar de comparación se utilizó para todos los
experimentos descritos a continuación.
Está claro que cuanto menor es la supervivencia, más tóxico es el efecto del CPA. La mayoría de amidas y 2-
el metoxietanol fue muy tóxico para los tejidos cerebrales.
EJEMPLO 2
Se estudió la toxicidad de algunas mezclas de vitrificación binaria para tejido cerebral de rata.
12
TABLA 2
-------------------------------------------------- -------------------------------------------
Toxicidad de las cuatro mezclas de vitrificación binaria para tejido cerebral de rata
Composición de VM
% De supervivencia de VM,%
-------------------------------------------------- -------------------------------------------
1,2 propanodiol - dimetilformamida
40 - 25 42,7 ± 4,6
1,2 propanodiol - dimetilsulfóxido
40 - 25 35,1 ± 3,4
dimetilformamida - dimetilsulfóxido 40 - 25 28,8 ± 4,5
etilenglicol - glicerol
40 - 25 52,6 ± 4,0
-------------------------------------------------- -------------------------------------------
Los experimentos se realizaron utilizando las mismas condiciones experimentales (25 minutos
exposición de los cortes de hipocampo de rata con 65% de VM a -20˚C).
Estas VM arrojaron peores resultados que la mejor VM que contenía EG y DMSO.
Los sistemas de vitrificación como amida - DMSO - EG - PG no se exploraron en detalle
porque Fahy y Wowk ya han estudiado este sistema (Patente de Estados Unidos 6.395.467).
13
EJEMPLO 3
Se estudiaron mezclas de vitrificación de etilenglicol-dimetilsulfóxido.
TABLA 3
-------------------------------------------------- -------------------------------------
Supervivencia de cortes de hipocampo de rata antes y después del enfriamiento
Composición de VM
supervivencia
supervivencia
antes de
después
enfriamiento,%
enfriamiento,%
-------------------------------------------------- -------------------------------------
25% EG, 40% DMSO
65 ± 7
63 ± 6
27% EG, 38% DMSO
73 ± 6
69 ± 5
32,5% EG, 32,5% DMSO
80 ± 8
81 ± 4
45% EG, 20% DMSO
87 ± 2
73 ± 3
50% EG, 15% DMSO
82 ± 2
56 ± 8
-------------------------------------------------- -------------------------------------
14
La supervivencia antes del enfriamiento reflejó la toxicidad del CPA. Supervivencia después del enfriamiento reflejado CPA
actividad de crioprotección, que fue el resultado final de toda la criopreservación.
El EG - DMSO VM (50% - 20%) demostró una vitrificación menos estable que el EG -
DMSO VM (45% - 15%) lo hizo. Un mayor porcentaje de EG en VM aumentó su viscosidad.
Un mayor porcentaje de DMSO en VM disminuyó su viscosidad pero aumentó su toxicidad.
EJEMPLO 4
Se estudió la influencia de varios detergentes sobre el volumen del cerebro de rata.
TABLA 4 Los resultados de los experimentos con varios detergentes
I concentraciones óptimas en
Soluciones I m-RPS-2 VM-1 Uniformidad Reproducción
Aniónico
1. SDS
0,01%
---
incluso
normal
2. SDBS
0,006%
0,002-0,004%
incluso
medio
3. SC
0,5%
0,3-1,2%
incluso
normal
15
4. SDC
0,06%
0,05-0,2%
incluso
normal
------------------
Catiónico
5. CPC
0,01%
---
medio desigual
6. CTAB
0,01%
0,005-0,02%
desigual mal
------------------
No iónico
7. Triton X100 no
---
incluso
normal
8. Preadolescentes
No
---
incluso
normal
9. Pluronic
No
---
incluso
normal
Anfótero
10. CHAPS
0,2%
0.01-0.04%
desigual mal
Notas: 1. Las concentraciones óptimas de detergentes en la solución m-RPS-2 representan la primera
tipo de experimentos. El detergente más poderoso es SDBS porque puede proteger a las ratas
cerebros contra la deshidratación a la concentración más baja. El detergente menos potente es SC
porque requiere la concentración más alta para proteger el cerebro de las ratas contra la deshidratación.
dieciséis
2. Las concentraciones óptimas de detergentes en soluciones VM-1 representan la segunda
experimentos de tipo.
3. “Uniformidad” significa la uniformidad de saturación de los cerebros de ratas con VM-1. "Incluso"
significa una saturación uniforme y uniforme de los cerebros de las ratas con VM-1. "Desigual" significa desigual,
saturación no uniforme de los cerebros de rata con VM-1. Es un indicador muy importante.
Los detergentes con perfusión VM desigual no son buenos detergentes para esta aplicación.
4. "Reproducción" significa la reproducción de los resultados de los experimentos. También es un
indicador importante.
Los mejores detergentes para nuestros propósitos son SDC y SDBS. SC es un buen detergente, pero es
detergente mucho menos potente que el detergente SDC.
SDS y CPC no tienen suficiente solubilidad en m-RPS-2 o en soluciones VM-1 a 2-
4ºC. CTAB y CHAPS dieron una saturación de VM desigual de los cerebros.
EJEMPLO 5
Se estudió la influencia del detergente SDBS sobre la supervivencia de las células cerebrales.
17
TABLA 5 Supervivencia de cortes de hipocampo preparados a partir de cerebros de rata perfundidos con 65%
Soluciones VM-1 con varias concentraciones y cantidades de detergente SDBS a 2-4ºC
-------------------------------------------------- --------------------------
Concentra- m
Supervivencia
Supervivencia
ción,%
antes de
después
enfriamiento,%
calentamiento,%
-------------------------------------------------- --------------------------
0,007
1,00
79,1 ± 4,5
21,6 ± 3,9
0,007
1,25
46,9 ± 4,9
43,5 ± 5,9
0,007
1,50
31,7 ± 2,7
34,5 ± 1,8
-------------------------------------------------- --------------------------
0,010
1,00
80,0 ± 5,7
0,012
1,00
36,7
-------------------------------------------------- --------------------------
0,0035
1,00
36,9 ± 5,4
-------------------------------------------------- ---------------------------
Donde: Concentración,% es concentración de SDBS en 15% de EG;
m es la relación entre el peso del 65% de VM-1 y el peso de la parte superior de la rata;
La supervivencia antes del enfriamiento, el% refleja la toxicidad;
18
La supervivencia después del calentamiento, el% refleja la supervivencia celular después de pasos completos de
criopreservación del cerebro de rata;
De la Tabla 5, se puede concluir que:
1. La relación óptima entre el peso del 65% de VM-1 y el peso de la parte superior de la rata fue
1,25 para obtener la máxima supervivencia celular después de la criopreservación. Concentración de VM-1 en la rata
cerebros fue probablemente del 57% al 60%. Concentración de VM-1 en el cerebro de rata con una proporción de 1,50
fue probablemente del 60% al 65%. La concentración de VM-1 en los cerebros de ratas con una proporción de 1,00 fue
probablemente menos del 55% -57% porque la vitrificación no fue estable.
2. Las concentraciones óptimas de SDBS son del 0,007% al 0,010%. Las concentraciones eran solo
comparado con la relación 1,00.
3. Disminuir la concentración del 0.007% de SDBS dos veces disminuyó la supervivencia celular aproximadamente
dos veces.
Se estudió la influencia del detergente SDC sobre la supervivencia de las células cerebrales.
19
TABLA 6 Supervivencia de cortes de hipocampo preparados a partir de cerebros de rata perfundidos con 65%
Soluciones VM-1 con varias concentraciones y cantidades de detergente SDC a 2-4ºC
-------------------------------------------------- ---
Concentra- m
Supervivencia
ción,%
antes de
enfriamiento,%
-------------------------------------------------- ----
0,10
1,00
67,7 ± 11,0
0,15
1,00
24,5 ± 3,2
0,05
1,00
28,9 ± 2,1
-------------------------------------------------- ------
Donde: Concentración,% es concentración de SDBS en 15% de EG;
m es la relación entre el peso del 65% de VM-1 y el peso de la parte superior de la rata;
La supervivencia antes del enfriamiento, el% refleja la toxicidad;
De la Tabla 6, se concluye que las concentraciones óptimas de SDC son del 0,1% al 0,13%.
Disminuir la concentración del 0.1% de SDC dos veces disminuyó la supervivencia celular alrededor de dos
veces.
20
No fue necesario realizar todos los pasos de criopreservación para SDC porque es suficiente
tener datos de toxicidad para comparar SDC con SDBS.
RECLAMACIÓN (ES
Reclamamos:
1. Detergentes aniónicos como dodecilbencenosulfonato de sodio (SDBS), sodio
desoxicolato (SDC), dodecilsulfonato de sodio (SDS), oxicolato de sodio (SO) y
otros pueden usarse para modificar la barrera hematoencefálica para la eliminación de enfermedades cerebrales graves
deshidratación durante la perfusión crioprotectora.
2. Detergentes aniónicos según la reivindicación 1, en los que los detergentes preferidos son SDBS y SDC.
con las concentraciones óptimas 0,007% a 0,010% para SDBS y 0,08% a 0,12% para
SDC.
3. Detergentes aniónicos según la reivindicación 2, en los que SDBS o SDC se pueden utilizar en la etapa de perfusión.
con un 15% de un agente crioprotector a 0ºC para evitar edemas severos de tejidos no cerebrales.
4. Detergentes aniónicos de la reivindicación 2, en los que la mezcla de vitrificación preferible consiste en
etilenglicol y dimetilsulfóxido.
21
RESUMEN
Un método para criopreservar cerebros enteros por vitrificación, que es un método para prevenir
deshidratación cerebral severa y formación de hielo. El método incluye el uso de modificadores
de la barrera hematoencefálica durante la saturación de los tejidos cerebrales con crioprotector
agentes y enfriamiento de los tejidos saturados a negativo (-) 120ºC. La criopreservación de CI
El método es efectivo para todas las mezclas de vitrificación, pero la mezcla de vitrificación preferida
contiene etilenglicol y dimetilsulfóxido. Para modificar la barrera hematoencefálica para
Eliminación de la deshidratación cerebral severa durante la perfusión, se utilizaron algunos detergentes. los
los modificadores preferibles de la barrera hematoencefálica son el dodecilbencenosulfonato de sodio y
desoxicolato de sodio. La concentración de dodecilbencenosulfonato de sodio se puede variar
de 0,007% a 0,010%. La concentración de desoxicolato de sodio se puede variar desde 0.08%
al 0,12%.