lunes, 23 de noviembre de 2020

Informe de investigación de CI: 2004

 


por Yuri Pichugin, PhD, Criobiólogo del personal, Cryonics Institute

Para mi tercer año de investigación en el Cryonics Institute, pude realizar 112 experimentos.

En 2003 elaboré el mejor método de vitrificación para cortes de hipocampo de rata. Este nuevo método permite conservar en promedio un 85% de las células de los cortes del cerebro después de un enfriamiento lento a -130ºC. Sin embargo, la aplicación de este método a cerebros completos encontró un gran obstáculo en forma de una fuerte deshidratación de los cerebros durante la perfusión crioprotectora. El cerebro perdió del 40 al 60% del volumen inicial y no se pudo restaurar ni siquiera con una perfusión a muy largo plazo. La deshidratación cerebral excesiva fue un factor nocivo. La causa de este problema fue una permeabilidad muy baja de la barrera hematoencefálica para los agentes crioprotectores. Este problema no se había resuelto en la ciencia antes de mi trabajo. No tuve ese problema con las delgadas rodajas de cerebro porque podían saturarse con mezclas de vitrificación por simple difusión.

Aparentemente, fui el primero en el mundo en encontrar compuestos que pudieran abrir completamente la barrera hematoencefálica para concentraciones elevadas de crioprotectores. Entonces, ahora puedo saturar todo el cerebro con mezclas de vitrificación sin deshidratarme. Es un gran descubrimiento para la ciencia y la tecnología criónica. Obtuve casi el 100% de supervivencia celular después de la perfusión de cerebros de ratas adultas con 40% de etilenglicol con la apertura de la barrera hematoencefálica y solo tuve un 30% de supervivencia celular en las mismas condiciones experimentales pero sin abrir la barrera. ¡Es una gran diferencia!

Intenté adaptar el nuevo método de vitrificación para su uso futuro cercano en pacientes con IC en condiciones reales de funerarias. Para las rodajas de cerebro, obtuve los mejores resultados saturando las rodajas con la mejor mezcla de vitrificación a -25ºC durante el período de tiempo óptimo de 15 minutos. La supervivencia del tejido cerebral dependía en gran medida del tiempo de exposición y la temperatura. Los directores de la funeraria no pueden utilizar -25ºC sino solo 0ºC para la perfusión del paciente. El uso de 0ºC en lugar de −25ºC para perfundir cerebros completos de ratas con una mezcla de vitrificación al 65% durante el tiempo óptimo resultó en una supervivencia celular promedio del 45% solamente. La supervivencia celular promediará solo el 26% si el tiempo de exposición es de 30 minutos en lugar de 15 minutos a una temperatura de exposición de 0ºC. El período de tiempo para la saturación completa de los cerebros de los pacientes con la mezcla de vitrificación suele ser más largo que el óptimo.

También estudié la influencia de la isquemia cálida en la viabilidad de los cortes de cerebro de rata. Las ratas después de su muerte fueron sometidas a exposiciones de 10 minutos, 30 minutos y 60 minutos a 22ºC y luego se mantuvieron en un refrigerador a 0ºC durante 8 horas. La viabilidad del corte de cerebro fue del 95% durante 10 minutos de isquemia caliente. Fue del 60% durante 30 minutos de isquemia cálida y solo del 40% durante 60 minutos de exposición cálida. La isquemia caliente es un factor mucho más dañino que la isquemia fría. Un período de tiempo post-mortem realista o típico para los pacientes puede ser de 60 minutos de isquemia caliente y de 8 a 12 horas de isquemia fría. Mis experimentos con el período de tiempo post-mortem real demostraron que la supervivencia del tejido cerebral era solo del 7% según el ensayo de relación K / Na después de la perfusión de las cabezas de rata con la mejor mezcla de vitrificación a 0ºC.

El ensayo de relación K / Na es una prueba muy confiable de viabilidad celular y tisular. El progreso en la investigación criónica no puede ser posible sin el uso de este método de evaluación. Pero el ensayo de relación K / Na funcional, muy sensible, no puede funcionar bien en algunos casos, por lo que debemos utilizar métodos de evaluación estructural y morfológica, como la microscopía óptica y electrónica. Sin embargo, estos métodos de evaluación morfológica son mucho más costosos, más complicados, menos disponibles y menos claros que el ensayo de K / Na. Ya hemos recibido algunos resultados de microscopía óptica y electrónica de laboratorios de Florida y Canadá, pero tenemos algunos problemas en este campo. Este trabajo se continuará para obtener resultados más claros.

La perfusión adecuada de pacientes reales con mezclas de vitrificación, así como con glicerol, es el problema más difícil para la criónica debido al mal estado del sistema cardiovascular para la mayoría de los pacientes y algunas otras causas. Especialmente, es cierto para el cuerpo de un paciente. Por ahora, es imposible saturar el cuerpo del paciente con mezclas de vitrificación para conseguir su vitrificación uniforme y estable. Es una de las razones por las que Alcor no ofrece vitrificación del cuerpo del paciente. Creo que el Cryonics Institute tampoco debería intentar vitrificar el cuerpo en la actualidad, sino utilizar un crioprotector diferente que seguirá mostrando una mejora con respecto a los métodos anteriores. El costo de todas las soluciones de perfusión para la cabeza de un paciente será de aproximadamente $ 50 dólares solamente. La duración de la perfusión de la cabeza será de aproximadamente 2 horas.

No habrá casos típicos estándar para los pacientes con el fin de usar una cantidad estándar fija de mezcla de vitrificación para obtener una vitrificación uniforme y estable. Mis experimentos con cabezas de oveja demostraron que debemos controlar la adecuación de la saturación del cerebro en todo momento. Para esto, traté de usar agujeros de trépano en el cráneo y midiendo los índices de refracción del fluido de los agujeros para conocer la saturación completa de los cerebros con la mezcla de vitrificación para obtener una vitrificación estable. Este trabajo aún está en curso. Será muy útil para nosotros probar el método de vitrificación en un paciente con IC antes de un anuncio oficial de que el Cryonics Institute ofrece a los miembros de IC el método de vitrificación.

Tengo planes de algunas mejoras posteriores del método de vitrificación. Diseñaré y realizaré una cámara de enfriamiento que permita realizar la perfusión vitrificación de la cabeza de un paciente a −25ºC. Elaboraré un procedimiento de enfriamiento más rápido de la cabeza de un paciente a través de sus vasos sanguíneos. Propondré diseñar y construir termocontenedores más perfectos y fiables para el enfriamiento uniforme de los pacientes con velocidades de enfriamiento muy lentas desde −130ºC hasta la temperatura del nitrógeno líquido para evitar romper el cerebro de los pacientes.

Tengo muchos materiales experimentales que me gustaría publicar en revistas científicas. Pero por ahora puede que no haga esto porque tenemos que tomar nuestra decisión si aceptamos patentes o no. En cualquier caso, me gustaría ofrecer algunos laboratorios de investigación y bancos de tejido cerebral para demostrar nuestros logros en el campo de la criopreservación de cortes cerebrales animales y cerebros completos. Además, me gustaría ofrecer a Alcor que compare el método de vitrificación CI con el método de vitrificación de Alcor utilizando ratas.

Informe de investigación de CI: 2003

 


por Yuri Pichugin, PhD, Criobiólogo del personal, Cryonics Institute

Para mi segundo año de investigación en el Cryonics Institute (CI) pude llevar a cabo 67 experimentos con cortes de hipocampo de rata realizando 200 tareas, 9 experimentos con corazones de ratas vivas, 18 experimentos con perfusión de cabezas de ratas enteras y 8 experimentos con perfusión de cabezas de oveja.

El propósito de todos los experimentos fue crear un método de vitrificación para CI. Es posible que no informe sobre los resultados concretos de los experimentos porque el instituto probablemente tomará una patente utilizando los resultados. Las combinaciones de todos los mejores agentes crioprotectores se probaron como mezclas para la vitrificación usando cortes de cerebro de rata viva y el ensayo de relación funcional K / Na. Varias mezclas de vitrificación podrían criopreservar los cortes de cerebro con aproximadamente un 75% de supervivencia. La mejor mezcla de vitrificación podría preservar los cortes de cerebro vivos con una supervivencia del 85% después de la vitrificación a -135º. El método de CI con glicerol proporcionó solo un 20% de supervivencia del corte de cerebro en las mejores condiciones de congelación. 85% y 20% es una gran diferencia.

También intenté probar la mejor mezcla de vitrificación para corazones de ratas vivas. Un corazón puede recuperarse según el principio: todo o nada. Habrá latidos cardíacos coordinados o solo algo de fibrilación que se detendrá durante la incubación del corazón. Desafortunadamente, los corazones de rata no pudieron recuperarse después de usar la mejor mezcla de vitrificación incluso sin un enfriamiento profundo. Todos los agentes crioprotectores conocidos son tóxicos para los órganos vivos en concentraciones altas y vitrificables (55-70%), o no pueden proteger los órganos de las lesiones por congelación en concentraciones más bajas. La criobiología todavía no puede crear un método de criopreservación que pueda proteger órganos vivos como corazones, riñones, hígados y otros con una recuperación completa para el trasplante.

Hoy en día, la criónica, en contraste con la criobiología moderna, no debería esperar un método de criopreservación completamente perfecto porque los pacientes muertos legales ya tienen defectos de la naturaleza humana que resultaron en su muerte y todas las secuelas deberían curarse de las tecnologías médicas futuras. El 85% de supervivencia del tejido cerebral es un buen resultado en comparación con el método de IC de criopreservación anterior, por lo que deberíamos elaborar el mejor método para el cerebro y el cuerpo de todo el paciente. Por lo tanto, el método de vitrificación debe probarse no solo en cortes de cerebro sino también en cerebros de animales vivos enteros.

Cuando empecé a trabajar con cabezas de ratas enteras, encontré un obstáculo en forma de barrera hematoencefálica de rata. La barrera era mucho menos penetrable para los crioprotectores que los humanos y otros mamíferos como ovejas, conejos, gatos, perros, etc. Mis experimentos recientes con la perfusión crioprotectora de cabezas muertas frescas de ovejas demostraron que la barrera hematoencefálica de las ovejas es más penetrable incluso para el glicerol que para las ratas. Sin embargo, se observó un alto grado de deshidratación cerebral junto con la mejor penetración del crioprotector.

Desafortunadamente, al instituto de criónica no se le permitió trabajar con animales vivos, excepto ratas sin licencia. Obtener las licencias es demasiado caro para el Instituto. Las cabezas de oveja muertas no son buenas para este propósito. Necesito usar conejos vivos para emplear el ensayo de relación funcional K / Na sensible para cortes de hipocampo vivos. Puedo perfundir cabezas de conejo con crioprotectores, enfriarlas a –130º, mantenerlas a esta temperatura, recalentarlas, lavarlas de crioprotectores y preparar cortes de hipocampo de los cerebros de conejo lavados para evaluar su supervivencia mediante el ensayo de relación K / Na. Buscaré la posibilidad de alquilar una habitación pequeña en las universidades locales que tienen la licencia para trabajar legalmente con conejos vivos.

Mi trabajo con cortes de cerebro de rata viva fue muy útil y los resultados del trabajo no perdieron su importancia para futuros experimentos con perfusión crioprotectora de cabezas enteras porque las células cerebrales de los mamíferos no son prácticamente diferentes de un mamífero a un mamífero. Si se pueden hacer que las condiciones experimentales de vitrificación para las células cerebrales de conejo sean las mismas que para los cortes de cerebro de rata, la supervivencia celular para estos casos podría ser la misma dentro de los errores experimentales. Se ha verificado que la supervivencia celular in vitro (para cortes de cerebro) y la supervivencia celular in vivo (para un cerebro completo) eran similares, por ejemplo, para compuestos tóxicos o fármacos, si la barrera hematoencefálica era suficientemente buena penetrable para estas sustancias. .

Tengo dos tipos de planes para mi futura investigación. El primero es un plan ideal para obtener mejores resultados.

  • Determinar los grados de deshidratación y penetración de glicerol para la barrera hematoencefálica humana post mortem a 0º en las condiciones estándar. Los cadáveres humanos deben estar relativamente frescos, es decir, deben mantenerse a 0º no más de 12-24 horas.
  • Determinar qué tipo de animal está más cerca del ser humano en cuanto a su penetración de glicerol a través de las barreras hematoencefálicas. Deben utilizarse conejos, gatos y perros pequeños. Será una selección de un modelo animal adecuado para posteriores investigaciones.
  • Seleccionar la mejor mezcla de vitrificación de las buenas mezclas de vitrificación utilizando el modelo animal adecuado y el ensayo de relación K / Na y electrofisiología.
  • Probar la mejor mezcla de vitrificación utilizando cadáveres humanos muertos relativamente frescos y probando la vitrificación de sus cabezas a −130º.
  • Estudiar la posibilidad de enfriar las cabezas humanas a -196º sin agrietarse.

Cumplir con el plan en los Estados Unidos sería muy difícil y costoso para CI. Creo que podría ser posible en Rusia en colaboración con científicos y crionistas rusos.

Mi segundo plan es trabajar con conejos vivos en el área de Michigan si puedo conseguir una habitación con licencia en una universidad.

  1. Encontrar un método óptimo de introducción de las mejores mezclas de vitrificación en las cabezas de conejo para evitar una deshidratación cerebral excesiva porque es uno de los factores más dañinos. Para ello, determinar los parámetros técnicos óptimos de perfusión de crioprotectores: velocidad de administración de crioprotectores, temperatura y velocidad de su disminución, y velocidad de concentraciones crecientes de crioprotectores en las mezclas de vitrificación.
  2. Verificar la completa vitrificación de las cabezas de conejo saturadas de forma óptima con la mejor mezcla de vitrificación enfriándolas a –130º.
  3. Encontrar un método óptimo para eliminar las cabezas de conejo de los crioprotectores y evaluar los resultados con el uso del procedimiento de preparación de cortes de cerebro de los cerebros lavados.
  4. A partir de los resultados, calcular los parámetros técnicos del método de vitrificación para cabezas de ovino y humano.
  5. Verificar los parámetros de las cabezas de ovino mediante el método de vitrificación para ellas de forma práctica.